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1、Westernblot基本操作步驟一、細胞蛋白的提取棄去培養(yǎng)基,加入預冷的PBS洗一遍,加入的RIPA裂解液(含1mMPMSF(100×),每10ml加蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑各一片,六孔板每孔150-250μl,60mm×15mm培養(yǎng)皿300-400μl,),于冰上裂解約5分鐘,裂解總液12000rpm離心10min。取上清,用BCA法測定蛋白濃度。用于westernblot的蛋白樣品取一定量加4×loadingbuffer,10×reducing,再用裂解液補齊到所需上樣體積。離心,使蛋白沉底。將EP管于沸水中煮5min,變性,之后再離心后準備上樣。二、BCA法測蛋白濃度操作步驟將蛋白
2、標準配制溶液溶解蛋白標準(BSA),配制成5mg/ml的蛋白標準溶液,10μl分裝,-20℃冷凍保存。完全溶解蛋白標準品,取10μl用PBS稀釋至100μl,使終濃度為0.5mg/ml。據(jù)樣品數(shù)量,按50體積BCA試劑A加1體積BCA試劑B(50:1)配制適量BCA工作液,充分混勻。BCA工作液室溫24小時內穩(wěn)定。將標準品按0,1,2,4,8,12,16,20μl加到96孔板的標準品孔中,加稀釋標準品的溶液補足到20μl。加適當體積樣品到96孔板的樣品孔中(可以通過預實驗摸索稀釋倍數(shù)),加PBS到20μl。各孔加入100μlBCA工作液,37℃放置30分鐘。測定580nm條件下吸光度。根據(jù)標
3、準曲線計算出蛋白濃度。三、Westernblot基本操作步驟1、溶液配制:①RunnigBuffer(1×):SDSRunnigBuffer(20×)50mL,加MiliQ水至1L;②TransferBuffer(1×):TransferBuffer(10×)100mL,甲醇200mL(20%,v/v),加MiliQ水至1L;③TBST緩沖液1MTris·HCl(pH7.6):60.5gTris-base,加入約30ml濃鹽酸,調PH至7.6,加MiliQ水至500ml。TBS緩沖液(10×):1MTris·HCl100ml+80gNaCl加MiliQ水1LTBST緩沖液(1×):TBS緩沖
4、液(10×)100ml+0.5mlTween-20(0.05%,v/v),加MiliQ水至1L。④封閉液:5%BSA(5g/100ml,稱取1gBSA至20mlTBST,充分混勻溶解)2、樣品準備與加樣①用4×SDSloadingbuffer,10×reducing與蛋白質樣品混合,并將此EP管放在水浴鍋中沸水煮5min,使蛋白質變性。②將預制膠固定到電泳裝置中,并在裝置中加滿RunnigBuffer(1×),內槽加入0.5mL抗氧化劑,小心拔下梳子;③向上樣孔中加入一定體積的蛋白樣品(總蛋白量20μg以上)。向marker孔中加入2.5μlmarker(按照實驗要求設定marker量),向
5、空白孔中加入一定體積的加樣緩沖液(loadingbuffer)。注意采用相同(或相近)的上樣體積,以保證蛋白的各帶寬度相同。防止體積較大的上樣孔中的蛋白質將向相鄰的泳道擴散。3、電泳將電泳裝置與電源連接。調節(jié)電壓為100-200V,電泳50min,直至溴酚蘭接近分離膠的底部,然后關閉電源并撤去連接的導線。拆除電泳裝置:先倒掉電泳緩沖液,連同槽一起將凝膠夾層取出,小心的撬起凝膠外層塑料板,使凝膠暴露出來,切去濃縮膠以及無蛋白樣品的凝膠部分(將膠留在短的一面塑料板上)。4、轉膜(濕轉)①將轉膜液(1×TransferBuffer)放于大飯盒內,泡4片海綿,剪4片濾紙、1片PVDF膜,PVDF膜于
6、甲醇中活化30s,取出置于轉膜液中;②按照2層海綿+2層濾紙+膠+膜+2層濾紙+5層海綿(填滿)的順序組裝轉膜裝置,注意組裝此裝置時一定要保證濾紙、膜、凝膠精確對齊并不留氣泡;③將組裝好的裝置放入電轉槽,合上蓋子,電轉槽置于冰浴,接通電源,調節(jié)電壓為15V,時間為16~18h(或恒流300mA,3h)。顯示紅燈亮后,按下Start后,開始轉膜。轉膜方向為蛋白從負極(黑色)轉向正極(紅色)。5、免疫印跡反應及化學發(fā)光檢測轉膜完畢后,根據(jù)目的蛋白分子量將膜剪成不同的條帶,用封閉液(5%BSA)室溫封閉2h。棄封閉液,加入用新的封閉液稀釋的一抗(可回收),室溫2h或4℃過夜。用TBST清洗3次,1
7、0min/次。二抗(可回收)室溫孵育1小時,室溫1xTBST洗滌3次,每次約10min。此步開始避光操作:將膜浸入化學發(fā)光底物工作液(A液:B液=1:1,終體積0.5-1ml即可)中,顯色2分鐘,放入BIO-RAD凝膠成像系統(tǒng)中顯影。內參分子量:β-actin:42kDaGAPDH:36kDaTubulin:51kDa