低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響

低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響

ID:8812205

大?。?00.50 KB

頁(yè)數(shù):7頁(yè)

時(shí)間:2018-04-08

低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響_第1頁(yè)
低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響_第2頁(yè)
低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響_第3頁(yè)
低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響_第4頁(yè)
低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響_第5頁(yè)
資源描述:

《低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響》由會(huì)員上傳分享,免費(fèi)在線閱讀,更多相關(guān)內(nèi)容在應(yīng)用文檔-天天文庫(kù)

1、低溫脅迫對(duì)玉米葉片抗寒性的影響生科1301張一鳴(東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院黑龍江哈爾濱150030)摘要:由于低溫可使幼苗的細(xì)胞膜脂發(fā)生改變,破壞膜結(jié)構(gòu),引起代謝紊亂,對(duì)植物造成傷害。為驗(yàn)證其傷害程度,本實(shí)驗(yàn)以九龍和利禾兩種玉米幼苗為原料,以低溫處理0h為對(duì)照組,4℃處理12h,24h為實(shí)驗(yàn)組,分別進(jìn)行葉綠體色素含量測(cè)定,過(guò)氧化物酶活性測(cè)定,電導(dǎo)儀法測(cè)定植物細(xì)胞質(zhì)膜透性實(shí)驗(yàn)來(lái)研究玉米葉片的抗寒性與抗冷性。結(jié)果表明低溫對(duì)玉米葉片造成極大影響,主要表現(xiàn)在葉綠體含量的降低,植物葉片電導(dǎo)率先上升后下降,過(guò)氧化氫酶逐漸降低??芍蜏赜衩兹~片受傷害程度與低溫持續(xù)時(shí)間,溫度密切相關(guān)

2、。關(guān)鍵詞:玉米抗寒性低溫脅迫葉綠體色素含量過(guò)氧化物酶活性電導(dǎo)儀法測(cè)細(xì)胞質(zhì)膜透性前言:植物固著于某地生長(zhǎng),難以遷移,因此易于受到環(huán)境如凍害,冷害【1】等影響。研究低溫脅迫與植物抗寒性的機(jī)理,有助于植物高產(chǎn)與當(dāng)?shù)厣鷳B(tài)環(huán)境的維護(hù)。據(jù)統(tǒng)計(jì),地球上只有不足10%的陸地適合栽種農(nóng)作物【2】,而在這10%的陸地上所產(chǎn)生的農(nóng)作物,因凍害所導(dǎo)致的經(jīng)濟(jì)損失,每年高達(dá)數(shù)千億美元【3】,例如僅在我國(guó)東北地區(qū)1969,1972,1976年的三次凍害每年均減產(chǎn)至少50億千克【4】。對(duì)于溫帶園林,高寒地帶移栽作物等,減免低溫對(duì)植物的影響更是重中之重,特別是我省黑龍江處于高寒地區(qū),本實(shí)驗(yàn)對(duì)于植物抗寒

3、性的研究更具實(shí)際意義。1.材料與方法1.1材料:九龍,利禾玉米種子,由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院植物生理教研室提供。1.2方法1.2.1玉米幼苗的培養(yǎng)分別取九龍,利禾玉米種子各300粒左右進(jìn)行消毒,然后用蒸餾水將玉米種子洗凈,在75%乙醇中消毒15s,浸種催芽處理12h后,用蒸餾水洗三次,洗去種子表面抑制生長(zhǎng)的物質(zhì),然后進(jìn)行沙培,將沙子平鋪在培養(yǎng)盤(pán)上,用噴壺澆適當(dāng)?shù)耐耆珷I(yíng)養(yǎng)液。將種子放在沙子上,種臍向上,種子間距離適當(dāng)。種子上覆蓋適當(dāng)?shù)纳匙?,約1cm厚,保證沙子濕度適當(dāng),培養(yǎng)條件為20℃,澆以全素營(yíng)養(yǎng)液,使生長(zhǎng)健康。當(dāng)植物長(zhǎng)出四片真葉時(shí)進(jìn)行試驗(yàn),低溫脅迫玉米幼苗并測(cè)定其

4、5項(xiàng)生理指標(biāo)。?1.2.2處理方法將每個(gè)品種的供試材料分為三組,一組于原處繼續(xù)生長(zhǎng),一組移至4℃冰柜低溫脅迫處理12h,另一組移至4℃冰柜進(jìn)行低溫脅迫處理24h,分別作為常溫對(duì)照和低溫處理處取材測(cè)定其生理生化指標(biāo)。1.2.3生理指標(biāo)的測(cè)定1)葉綠素含量—分光光度計(jì)—乙醇法1.稱取剪好的新鮮玉米葉片0.2g,放入研缽中,加入少量石英砂與碳酸鈣及8ml提取液,研磨成勻漿,室溫靜置3—5min后轉(zhuǎn)到10ml離心管中,4000r/min離心5min,取上清液倒入容量瓶定容至25ml。2.將提取液倒入比色杯中,以95%乙醇為空白,在波長(zhǎng)為649nm,665nm下測(cè)定吸光度。3.

5、計(jì)算:Ca=13.95*A665-6.88*A649Cb=24.96*A665-7.32*A665CT=Ca+Cb葉綠體色素含量(mg/g)=CT*V*N/W式中:CT——色素濃度(mg/ml)V——提取液體積(ml)N——植物組織鮮重(g)W——稀釋倍數(shù)2)過(guò)氧化物酶活性——愈創(chuàng)木酚法1.稱取0.5g葉片,剪碎,放入研缽中,加適量磷酸緩沖液(pH5.5)研磨成勻漿,將勻漿倒入離心管,4000rpm,離心10min,取上清液,定容至10ml。2.酶活性測(cè)定的反應(yīng)體系包括2.9ml0.05M磷酸緩沖液;1.0ml2%H2O2;1.0ml0.05愈創(chuàng)木酚和0.1ml酶液。

6、用加熱煮沸5min的酶液作對(duì)照組,反應(yīng)體系加入酶液后,立即于37℃水浴中保溫15min,并加入2.0ml20%的三氯乙酸終止反應(yīng),在470nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度。3.計(jì)算:過(guò)氧化物酶活性=(A470*VT)(0.01*W*VS*t)A470——反應(yīng)時(shí)間內(nèi)吸光度變化W——樣品鮮重t——反應(yīng)時(shí)間VT——提取酶液總體積Vs——測(cè)定取用酶液體積3)植物細(xì)胞質(zhì)膜透性——電導(dǎo)儀法1.用6—8mm打孔器打取葉圓片,每組30片,分裝3只稱量瓶。2.每瓶各加10ml去離子水,于針筒中抽去細(xì)胞間空氣,水滲入細(xì)胞間隙,葉片呈半透明狀,沉入水下,室溫防止1h。3.將各瓶充分搖勻,用電導(dǎo)率儀測(cè)初電

7、導(dǎo)值(s1)4.將各瓶置沸水浴10min,殺死植物組織,取出稱量瓶,冷卻至室溫,在室溫下平衡10min,搖勻,測(cè)最終電導(dǎo)值(s2)5.計(jì)算:相對(duì)電導(dǎo)率(L)=(S1-S0)/(S2-S0)傷害率(%)=(L1-Lck)/(1-Lck)S0——蒸餾水電導(dǎo)率S1——煮沸前電導(dǎo)率S2——煮沸后電導(dǎo)率L1——低溫處理時(shí)葉片的相對(duì)電導(dǎo)率Lck——對(duì)照(室溫下)葉片的相對(duì)電導(dǎo)率2結(jié)果與分析2.1低溫脅迫對(duì)葉綠素含量的影響初始數(shù)據(jù):初始數(shù)據(jù)九龍利禾葉綠素吸光值A(chǔ)649A665A649A6650h0.4441.0340.4391.0420.4421.0480.439

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁(yè),下載文檔查看全文

此文檔下載收益歸作者所有

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁(yè),下載文檔查看全文
溫馨提示:
1. 部分包含數(shù)學(xué)公式或PPT動(dòng)畫(huà)的文件,查看預(yù)覽時(shí)可能會(huì)顯示錯(cuò)亂或異常,文件下載后無(wú)此問(wèn)題,請(qǐng)放心下載。
2. 本文檔由用戶上傳,版權(quán)歸屬用戶,天天文庫(kù)負(fù)責(zé)整理代發(fā)布。如果您對(duì)本文檔版權(quán)有爭(zhēng)議請(qǐng)及時(shí)聯(lián)系客服。
3. 下載前請(qǐng)仔細(xì)閱讀文檔內(nèi)容,確認(rèn)文檔內(nèi)容符合您的需求后進(jìn)行下載,若出現(xiàn)內(nèi)容與標(biāo)題不符可向本站投訴處理。
4. 下載文檔時(shí)可能由于網(wǎng)絡(luò)波動(dòng)等原因無(wú)法下載或下載錯(cuò)誤,付費(fèi)完成后未能成功下載的用戶請(qǐng)聯(lián)系客服處理。