細胞的凍存和復蘇

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1、細胞的凍存和復蘇2007-07-20??????點擊:179???本文共1篇文章一、原理在不加任何條件下直接凍存細胞時,細胞內(nèi)和外環(huán)境中的水都會形成冰晶,能導致細胞內(nèi)發(fā)生機械損傷、電解質(zhì)升高、滲透壓改變、脫水、PH改變、蛋白變性等,能引起細胞死亡。如向培養(yǎng)液加入保護劑,可使冰點降低。在緩慢的凍結(jié)條件下,能使細胞內(nèi)水份在凍結(jié)前透出細胞。貯存在-130℃以下的低溫中能減少冰晶的形成。細胞復蘇時速度要快,使之迅速通過細胞最易受損的-5~0℃,細胞仍能生長,活力受損不大。目前常用的保護劑為二甲亞砜(DMSO)和甘油,它們對細胞無毒性,分

2、子量小,溶解度大,易穿透細胞。二、操作步驟(一)凍存1、消化細胞(同實驗二),將細胞懸液收集至離心管中。2、1000rpm離心10分鐘,棄上清液。3、沉淀加含保護液的培養(yǎng),計數(shù),調(diào)整至5×106/ml左右。4、將懸液分至凍存管中,每管1ml。5、將凍存管口封嚴。如用安瓿瓶則火焰封口,封口一定要嚴,否則復蘇時易出現(xiàn)爆裂。6、貼上標簽,寫明細胞種類,凍存日期。凍存管外拴一金屬重物和一細繩。7、按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘〕→冰箱冷凍室(30分鐘)→低溫冰箱(-30℃1小時)→氣態(tài)氮(30分鐘)→液氮。注意:操作時應小心,以免

3、液氮凍傷。液氮定期檢查,隨時補充,絕對不能揮發(fā)干凈,一般30立升的液氮能用1~1.5月。(二)復蘇1、準備一個茶缸或1000ml的燒壞,內(nèi)裝2/3杯37℃的溫水。2、從液氮中取出凍存管、迅速置于溫水中并不斷攪動。使凍存管中的凍存物在1分鐘之內(nèi)融化。3、打開凍存管,將細胞懸液吸到離心管中。4、1000rpm離心10分鐘,棄去上清液。5、沉淀加10ml培養(yǎng)液,吹打均勻,再離心10分鐘,棄上清液。6、加適當培養(yǎng)基后將細胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中,37℃培養(yǎng),第二天觀察生長情況。三、試劑和器材器材:液氮罐、凍存管(塑料螺口專用凍存管或安瓿瓶)、離

4、心管、吸管、離心機等試劑:0.25%胰酶、培養(yǎng)基、含保護劑的培養(yǎng)基(即凍存液)附:凍存液配制:培養(yǎng)基加入甘油或DSMO,使其終濃度達5—20%。保護劑的種類和用量視不同細胞而不同。配好后4℃下保存。細胞的傳代培養(yǎng)2007-07-20??????點擊:232???本文共1篇文章一、原理細胞在培養(yǎng)瓶長成致密單層后,已基本上飽和,為使細胞能繼續(xù)生長,同時也將細胞數(shù)量擴大,就必須進行傳代(再培養(yǎng))。傳代培養(yǎng)也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養(yǎng)細胞進行各種實驗的必經(jīng)過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以,而貼壁細胞需經(jīng)消化后才能分瓶。

5、二、材料和試劑1、細胞:貼壁細胞株2、試劑:0.25%胰酶、1640培養(yǎng)基(含10%小牛血清)3、儀器和器材:倒置顯微鏡,培養(yǎng)箱、培養(yǎng)瓶、吸管、廢液缸等三、操作步驟1、將長滿細胞的培養(yǎng)瓶中原來的培養(yǎng)液棄去。2、加入0.5—1ml0.25%胰酶溶液,使瓶底細胞都浸入溶液中。3、瓶口塞好橡皮塞,放在倒置鏡下觀察細胞。隨著時間的推移,原貼壁的細胞逐漸趨于圓形,在還未漂起時將胰酶棄去,加入10ml培養(yǎng)液終止消化。觀察消化也可以用肉眼,當見到瓶底發(fā)白并出現(xiàn)細針孔空隙時終止消化。一般室溫消化時間約為1—3分鐘。4、用吸管將貼壁的細胞吹打成懸

6、液,分到另外兩到三瓶中,實踐培養(yǎng)液塞好橡皮塞,置37℃下繼續(xù)培養(yǎng)。第二天觀察貼壁生長情況。附:消化液配制方法:稱取0.25克胰酶蛋白酶(活力為1:250),加入100ml無Ca2、Mg2的Hank’s液溶解,濾器過濾除菌,4℃保存,用前可在37℃下回溫。胰酶溶液中也可加入EDTA,使最終濃度達0.02%。細胞培養(yǎng)技術(shù)2007-07-20??????點擊:367???本文共1篇文章細胞培養(yǎng)的一般過程一、準備工作準備工作對開展細胞培養(yǎng)異常重要,工作量也較大,應給予足夠的重視,推備工作中某一環(huán)節(jié)的疏忽可導致實驗失敗或無法進行。準備工作

7、的內(nèi)容包括器皿的清洗、干燥與消毒,培養(yǎng)基與其他試劑的配制、分裝及滅菌,無菌室或超凈臺的清潔與消毒,培養(yǎng)箱及其他儀器的檢查與調(diào)試,具體內(nèi)容可參閱有關(guān)文獻。二、取材在無菌環(huán)境下從機體取出某種組織細胞(視實驗目的而定),經(jīng)過一定的處理(如消化分散細胞、分離等)后接入培養(yǎng)器血中,這一過程稱為取材。如是細胞株的擴大培養(yǎng)則無取材這一過程。機體取出的組織細胞的首次培養(yǎng)稱為原代培養(yǎng)。理論上講各種動物和人體內(nèi)的所有組織都可以用于培養(yǎng),實際上幼體組織(尤其是胚胎組織)比成年個體的組織容易培養(yǎng),分化程度低的組織比分化高的容易培養(yǎng),腫瘤組織比正常組織容

8、易培養(yǎng)。取材后應立即處理,盡快培養(yǎng),因故不能馬上培養(yǎng)時,可將組織塊切成黃豆般大的小塊,置4℃的培養(yǎng)液中保存。取組織時應嚴格保持無菌,同時也要避免接觸其他的有害物質(zhì)。取病理組織和皮膚及消化道上皮細胞時容易帶菌,為減少污染可用抗菌素處理。由組織并分離分散細胞的方法可

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