外源基因在大腸桿菌中表達(dá)簡(jiǎn)略實(shí)驗(yàn)步驟

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1、目的基因在大腸桿菌中的誘導(dǎo)表達(dá)一般程序如下:獲得目的基因-準(zhǔn)備表達(dá)載體-將目的基因插入表達(dá)載體中(測(cè)序驗(yàn)證)-轉(zhuǎn)化表達(dá)宿主菌-誘導(dǎo)靶蛋白的表達(dá)-表達(dá)蛋白的分析-擴(kuò)增、純化、進(jìn)一步檢測(cè)。[主要試劑]1、LB培養(yǎng)基。2、100mMIPTG(異丙基硫代-β-D-半乳糖苷):2.38gIPTG溶于100mlddH2O中,0.22μm濾膜抽濾,-20℃保存。[操作步驟]1、通過(guò)PCR方法獲得目的基因:以含目的基因的克隆質(zhì)粒為模板,按基因序列設(shè)計(jì)一對(duì)引物(在上游和下游引物分別引入不同的酶切位點(diǎn),本實(shí)驗(yàn)中為BamHⅠ和HiindⅢ),PCR循環(huán)獲得所需基因片段

2、。PCR反應(yīng)體系為:模板(含R基因的重組質(zhì)粒)1μl上游引物PR11μl下游引物1μldNTP(2.5mmol/L)5μl10×PCRbuffer(含Mg2+)10μlTaq酶1μlddH2O補(bǔ)至100μlPCR反應(yīng)條件為:94℃變性3min;94℃變性3min、52℃復(fù)性40sec、72℃延伸1min,30個(gè)循環(huán);最后72℃延伸8min。2、構(gòu)建重組表達(dá)載體(1)載體酶切:將表達(dá)質(zhì)粒pRSETA用限制性內(nèi)切酶(同引物的酶切位點(diǎn))進(jìn)行雙酶切,酶切產(chǎn)物行瓊脂糖電泳后,用凝膠回收Kit或凍融法回收載體大片段。(2)R基因PCR產(chǎn)物雙酶切后回收,在T4

3、DNA連接酶作用下連接入載體。連接反應(yīng)體系為:pRSETA1μlR基因片段3μlT4DNA連接酶(5U/μl)1μl5×buffer2μlddH2O補(bǔ)至10μl3、獲得含重組表達(dá)質(zhì)粒的表達(dá)菌種(1)將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,根據(jù)重組載體的標(biāo)志(抗Amp)作篩選,挑取單斑,堿裂解法小量抽提質(zhì)粒,雙酶切初步鑒定。(2)測(cè)序驗(yàn)證目的基因的插入方向及閱讀框架均正確,進(jìn)入下步操作。否則應(yīng)篩選更多克隆,重復(fù)亞克隆或亞克隆至不同酶切位點(diǎn)。(3)以此重組質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)化表達(dá)宿主菌BL21(DE3)的感受態(tài)細(xì)胞。4、誘導(dǎo)表達(dá)1、挑取含重組質(zhì)粒的菌體單斑至2ml

4、LB(含Amp50μg/ml)中37℃過(guò)夜培養(yǎng)。2、按1∶100比例稀釋過(guò)夜菌,一般將1ml菌加入到含100mlLB培養(yǎng)基的300ml培養(yǎng)瓶中,37℃震蕩培養(yǎng)至OD600≌0.5-0.8(最好0.6,大約需3hr)。3、取部分液體作為未誘導(dǎo)的對(duì)照組,余下的加入IPTG誘導(dǎo)劑至終濃度1mM作為實(shí)驗(yàn)組,兩組繼續(xù)于37℃、200rpm震蕩培養(yǎng)3hr。4、分別取菌體1ml,,離心12000g×30s收獲沉淀,用100μl1%SDS重懸,混勻,70℃10min。5、離心12000g×1min,取上清作為樣品,可做SDS-PAGE等分析。65500rpm15

5、min收集細(xì)胞7溶菌酶破碎細(xì)胞制備過(guò)柱上清8過(guò)柱純化帶組氨酸標(biāo)簽蛋白

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