western blot失敗經(jīng)驗(yàn)總結(jié)

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1、western?blot失敗經(jīng)驗(yàn)總結(jié)1我做了很久的WB,最大的一個難點(diǎn)感覺在于樣品制備上!蛋白的降解有些時候是你想象不到的,可能出奇的糟糕,也可能完全沒事~~如果單獨(dú)做WB的話,感覺以“快速徹底裂解,先變性后保存”的原則比較有效,盡量選擇足夠強(qiáng)的裂解液,甚至直接給loadingbuffer裂解,然后取出部分蛋白定量,其余加入loadingbuffer100度充分變性,再分裝保存。有些時候比蛋白酶抑制劑更有效。另一個感覺就是樣品中目的蛋白的量,限于WB的檢測下限問題,一般目的蛋白量最好別低于1ng(雖然ECL法下限是0.1ng,即100pg),最好在10ng以上為好。這就要求

2、在做WB之前必須充分考慮目的蛋白的可能豐度,最好充分的準(zhǔn)備工作然后再設(shè)計(jì)細(xì)胞量或者組織量,千萬別把樣品搞稀了,否則就不好辦了。最后,還是多看文獻(xiàn),在做某個蛋白之前最好看看別人是如何做的,有什么特殊要求,內(nèi)參如何選等等。western?blot失敗經(jīng)驗(yàn)總結(jié)2我就跑膠和轉(zhuǎn)膜談一點(diǎn)兒自己的體會1、跑膠電泳Buffer重復(fù)利用的時候要注意,不能混濁,有時候能用個3-4次,有時候第二次都不行了,事先前預(yù)電泳一下,看看氣泡的均勻度;Buffer一定要淹過梳子孔,否則就會發(fā)現(xiàn)今天的蛋白不會跑;跑的時候先用低電壓跑過濃縮膠,再換高電壓跑分離膠,不要追求速度,慢慢跑條帶會分離的更好,特別是對

3、于高分子量的目的蛋白;2、轉(zhuǎn)膜我用的是濕轉(zhuǎn),Buffer一定要預(yù)冷,最好提前一天配好放4度;濾紙不要大過PVDF膜,防止短路;膠在負(fù)極,膜靠近正極,放入Tank前檢查一遍會使你免以體會放反的痛心疾首;膜要標(biāo)記好正反面;轉(zhuǎn)膜過程中,經(jīng)常過去看看,防止意外,如電泳儀接觸不好。WESTERN?BLOTTING心得1.??總蛋白提?。ò?,胞漿,胞核):組織勻漿后,15000g,4度,20分鐘后,取上清.Buffer:NP40750ul,脫氧膽酸鈉0.5克,SDS0.1克,加1*PBS至100ml.再加入PMSF(7.4mg/ml)0.1ml.(現(xiàn)用現(xiàn)加)7.4mg/mlPMSP異

4、丙醇溶液:取AmgPMSF加A/7.4ml異丙醇.工廠-20度儲存2.組織膜蛋白提?。核诓僮鞅线M(jìn)行(1)取組織,用PBS沖洗干凈組織上的血液.加入10mlBufferA,用剪刀盡可能剪碎組織,于冰上充分勻漿。每次30秒,重復(fù)3-5次.(2)離心機(jī)1000rpm,4℃離心10min后,所得上清液轉(zhuǎn)入超速離心管。(去掉大塊組織及結(jié)締組織)(3)100000g,4℃離心1hr,棄去上清.(此為胞漿蛋白,若只提取胞漿蛋白,可用10000rpm,4度,30分鐘離心,取上清即可)。沉淀用適量的BufferB重懸,4度過夜后,分裝至EP管,Eppendorf臺式離心機(jī)10000rpm

5、,4℃離心30min。(4)收集所得上清液即為膜組份。BufferA:0.32M蔗糖,5mMTris-HCl(PH7.5),120mMKCl,1mMEDTA,1mMEGTA,0.2mMPMSF,1ug/mlLeupeptin,1ug/mlPepstatinA,1ug/mlAprotinin。冰上預(yù)冷。BufferB20mMHEPES(PH7.5),10%甘油,2%TritonX-100,1mMEDTA,1mMEGTA,0.2mM,PMSF,1ug/mlLeupeptin,1ug/mlPepstatinA,1ug/mlAprotinin。冰上預(yù)冷。所得蛋白分裝EP管(每管約5

6、0ul),取一管測蛋白濃度,其它放入-70度深凍冰箱保存。如果要定量的話,最好能立即根據(jù)濃度,加入上樣緩沖,煮沸,4度保存。反復(fù)凍融蛋白會降解,濃度不準(zhǔn)??捡R斯亮蘭G250測蛋白濃度:考馬斯亮蘭G250配方:G2500.4克,95%乙醇100ml,85%磷酸200ml,加水至2000ml,過濾后使用。BSA標(biāo)準(zhǔn)液:0.5mg/mlBSA,雙蒸水配制。配制標(biāo)準(zhǔn)液(濃度分別為0,10,20,30,40,50ug/ul):??1??2??3??4??53??6G250??3ml??3ml??3ml??3ml??3ml??3ml0.5mg/mlBSA??------??20ul??

7、40ul??60ul??80ul??100ulddH2O??100ul??80ul??60ul??40ul??20ul??-----待測蛋白配液:每管3mlG250,2ul樣品,98ulddH2O。(若加入樣品后,液體沒有變藍(lán)色,則可再加2ul樣品,ddH2O減為96ul,標(biāo)準(zhǔn)液濃度可適當(dāng)擴(kuò)大。)紫外分光光度計(jì),595nm,用1號管調(diào)零,制出標(biāo)準(zhǔn)曲線,標(biāo)準(zhǔn)方程及R值(R值應(yīng)大于0.99,否則操作誤差較大),測量待測蛋白OD值,算出蛋白濃度。(若加入2ul樣品,則濃度值需除2,方為真正濃度;若加4ul樣品,則除4)聚

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