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1、小鼠肝Kupffer細胞分離方法探討作者:嚴茂林王耀東田毅峰賴智德周松強邱福南【摘要】 目的探討分離BALB/c小鼠肝Kupffer細胞(KC)的方法。方法采用在體酶灌注和離體酶消化、不連續(xù)密度梯度離心、選擇性貼壁三步法分離KC,并比較鏈霉蛋白酶、Ⅳ型膠原酶及聯(lián)用鏈霉蛋白酶和Ⅳ型膠原酶等3種不同酶消化分離方法所得KC得率及純度。結(jié)果3種不同酶消化分離方法細胞得率分別為(6.32±0.5)×106g-1,(3.66±0.4)×106g-1,(10.3±0.7)×106g-1;細胞純度分別為(93.2±1.7)%,(90.7±1.5)%,(94.5±1.9)%。結(jié)論聯(lián)合鏈霉蛋白酶
2、和Ⅳ型膠原酶在體灌注和離體消化是分離小鼠KC的較好方法?!娟P(guān)鍵詞】肝;枯否細胞;離心法,梯密度;小鼠,近交BABLc;細胞分離 肝Kupffer細胞(Kupffer10cell,KC)為定居在肝竇內(nèi)的巨噬細胞,約占全身單核巨噬細胞總數(shù)的80%~90%。肝KC能吞噬、殺滅病原微生物,清除體內(nèi)的內(nèi)毒素,并具有抗原遞呈、分泌細胞因子等免疫調(diào)節(jié)作用,同時影響肝細胞、貯脂細胞及內(nèi)皮細胞的生物學(xué)功能[1]。近期發(fā)現(xiàn)KC能誘導(dǎo)同種異體T淋巴細胞凋亡,在調(diào)節(jié)肝移植免疫耐受中發(fā)揮重要作用[2]。如何獲得較多數(shù)量和較高純度的KC是研究其在機體中作用機制的首要條件。而傳統(tǒng)的分離方法往往因數(shù)量和純度
3、不足而影響實驗結(jié)果。本試驗采用在體酶灌注和離體酶消化、不連續(xù)密度梯度、選擇性貼壁三步法分離KC,探討分離小鼠肝KC的較好方法?! ?材料與方法 1.1材料 1.1.1實驗動物BABL/c小鼠,雄性,10~12周齡,清潔級,由四川大學(xué)華西醫(yī)學(xué)中心試驗動物中心提供(許可證號:046)。試驗前禁食12h,自由飲水,隨機分為3組?! ?.1.2主要試劑和儀器Ⅳ型膠原蛋白酶、DNAaseⅠ、Percoll及HEPES(美國Sigma公司);兔抗人溶菌酶(lysozyme,美國DAKO公司);鏈霉蛋白酶E(瑞士Roche公司);RPMI1640培養(yǎng)基(美國Gibco公司)。超凈工作臺
4、(蘇州凈化設(shè)備廠),倒置顯微鏡(日本Nikon公司),低溫高速離心機(美國Beckman公司)?! ?.1.3主要液體的配制(1)前灌注液(Hank's平衡鹽溶液)。KCl5mmol/L,KH2PO41mmol/L,NaCl115mmol/L,HEPES2510mmol/L。調(diào)整pH值為7.4。(2)后灌注液及酶消化液配制。后灌注液、酶消化液均由hank's平衡鹽溶液配制。方法1中的后灌注液含0.20%鏈霉蛋白酶2mL;酶消化液:含0.20%鏈霉蛋白酶2mL、0.012%DNAaseⅠ2mL;方法2中的后灌注液含0.025%Ⅳ型膠原酶2mL。酶消化液:含0.05%IV型膠原酶2
5、mL;方法3中的后灌注液含0.05%Ⅳ型膠原酶1mL、0.4%鏈霉蛋白酶1mL;酶消化液:含0.10%Ⅳ型膠原酶1mL、0.40%鏈霉蛋白酶1mL、0.012%DNAaseⅠ2mL; 1.1.4SPS液的配制100%Percoll液和8.5%NS以9∶1的比例混合,配制成SPS原液;以70%Percoll液2mL配制:SPS1.4mL和PBS0.6mL混合配制所得;30%Percoll液的配制:PBS1.4mL和SPS0.6mL混合配制所得?! ?.1.5RPMI1640完全培養(yǎng)基的配制按說明書配制,0.22μm濾器過濾除菌,臨用前加入10%新鮮滅活的小牛血清,青霉素100
6、U/mL,鏈霉素100μg/mL?! ?.2BABL/c小鼠KC分離方法 1.2.1原位肝臟灌注步驟參考文獻[3]。 1.2.2肝臟非實質(zhì)細胞的提取及離心將上述肝細胞濾液4℃離心(800r/min×8min),取沉淀。加入PBS4mL,4℃離心(80r/min×3min),除去沉淀,取上清。加入PBS4mL充分混勻,再次以4℃10離心(150r/min×8min),取沉淀。沉淀加入PBS2mL,充分混勻。取10mL離心管1支,依次加入70%Percoll、30%Percoll、細胞懸液各2mL及少許PBS,4℃離心(1600r/min×22min)。離心管自上而下依次為:細
7、胞碎片、30%Percoll層、30%Percoll層與70%Percoll層之間的是大量KC及少量肝竇內(nèi)皮細胞、70%Percoll層、離心管底層為少許紅細胞。取30%Percoll和70%Percoll層之間的白色物,PBS8mL稀釋細胞,4℃離心1次(600r/min×8min),4℃分別離心(150r/min×8min)2次,除去上清。 1.2.3KC貼壁培養(yǎng)將上述細胞沉淀用適量10%胎牛RPMI1640稀釋,取10μL用臺盼藍染色檢測細胞活性及細胞計數(shù),分別計算3種方法的KC得率