原核表達(dá)及純化方法

原核表達(dá)及純化方法

ID:42605841

大?。?9.50 KB

頁數(shù):7頁

時(shí)間:2019-09-18

原核表達(dá)及純化方法_第1頁
原核表達(dá)及純化方法_第2頁
原核表達(dá)及純化方法_第3頁
原核表達(dá)及純化方法_第4頁
原核表達(dá)及純化方法_第5頁
資源描述:

《原核表達(dá)及純化方法》由會(huì)員上傳分享,免費(fèi)在線閱讀,更多相關(guān)內(nèi)容在教育資源-天天文庫。

1、原核表達(dá)及純化-Histag一、原核表達(dá)1.挑取一個(gè)單菌落(重組表達(dá)載體),接種到10mLLB培養(yǎng)基中(注意抗生素抗性)。37℃,過夜搖菌。2.次日,將菌液接種到1LLB培養(yǎng)基中(1:50~1:100),繼續(xù)培養(yǎng)至OD600=0.6時(shí)(0.6~0.8),加1×IPTG誘導(dǎo)4h。(加IPTG前留樣(誘導(dǎo)前全菌蛋白)200μL做SDS-PAGE)3.收菌:(1)200μL誘導(dǎo)后全菌;(2)小量表達(dá):收集5mL誘導(dǎo)后全菌,12000g離心1min,裂解沉淀,分別收集上清(可溶性)和沉淀(包涵體)中的蛋白。大量表達(dá):收集1L誘導(dǎo)后全菌,4

2、℃,4500g離心15~30min。二、可溶性分析目的:重組蛋白是否表達(dá),是可溶性的還是包涵體形式。根據(jù)這個(gè)結(jié)果選擇純化方法。(1)各用30μL4×SDSLoadingbuffer重懸誘導(dǎo)前和誘導(dǎo)后的菌體(200μL);用500μL1×BindingBuffer重懸菌體(5mL),超聲破碎(3min,超2s,挺3s,27%能量;溶液透亮即可);4℃,19000g離心15min,分離上清和沉淀;(2)用30μL4×SDSLoadingbuffer重懸沉淀;(3)取10μL上清蛋白加10μL4×SDSLoadingbuffer;(4)

3、將誘導(dǎo)前全菌,誘導(dǎo)后全菌,上清蛋白和包涵體蛋白煮沸5~10min。(5)各取10μL用于SDS-PAGE檢測(12%的膠)。三、小量富集實(shí)驗(yàn)樣品制備:7取5mL誘導(dǎo)全菌,用500μL1×BindingBuffer(8MUrea)溶解,超聲破碎(3min,超2s,挺3s,27%能量;溶液透亮即可)。4℃,19000g離心15min,取上清用于富集實(shí)驗(yàn)。(留樣做SDS-PAGE)富集:1.裝柱:取30μL~50μL體積的Ni柱料(純柱料)于1.5mL離心管中。2.平衡:向離心管中加200μL1×BindingBuffer(8MUrea

4、),混勻1min,700g離心1min,去上清;重復(fù)一次。3.上樣:將制備的上清蛋白加到離心管中,混勻30min(混勻儀上)。700g離心1min,上清即為穿透(留樣做SDS-PAGE)。4.淋洗:加50μL1×BindingBuffer(8MUrea,5mM咪唑),混勻,700g離心1min,分離上清,留樣做SDS-PAGE;加50μL1×BindingBuffer(8MUrea,10mM咪唑),混勻,700g離心1min,分離上清,留樣做SDS-PAGE;加50μL1×BindingBuffer(8MUrea,20mM咪唑),

5、混勻,700g離心1min,分離上清,留樣做SDS-PAGE;5.洗脫:加50μL1×ElutionBuffer(8MUrea,50mM咪唑),混勻,700g離心1min,分離上清,留樣做SDS-PAGE;加50μL1×BindingBuffer(8MUrea,3000mM咪唑),混勻,700g離心1min,分離上清,留樣做SDS-PAGE;6.取少量柱料做SDS-PAGE;注:用定量工作液估計(jì)蛋白的濃度:2μL待測蛋白溶液+180μL定量工作液,根據(jù)顏色的變化可以估計(jì)蛋白的濃度。對富集過程進(jìn)行監(jiān)控。一、大量富集實(shí)驗(yàn)樣品制備:用5

6、0mL1×BindingBuffer(8MUrea)溶解菌體,超聲破碎(3min,超2s,挺3s,27%能量;溶液透亮即可)或者用高壓破碎儀(推薦)。4℃,19000g離心15min,取上清用于富集實(shí)驗(yàn)。(留樣做SDS-PAGE)富集:1.裝柱:將1mLNi柱料裝入層析柱,7用至少三個(gè)柱體積的超純水以工作流速(每滴/3S)壓實(shí)柱料,以獲得均一的柱床,同時(shí)避免帶入氣泡。注:以下的層析操作流速不要超過裝柱流速的1.75倍。1.柱平衡:三個(gè)柱體積的1×BindingBuffer(8MUrea)平衡柱料。注:柱子掛上鎳離子后,可在Bing

7、ing溶液中過夜,4℃。2.上樣:視樣品的多少可選用LOOP或由泵直接上樣兩種方式,接穿透峰以備SDS-PAGE檢測。3.淋洗:去除非特異結(jié)合的蛋白質(zhì),接穿透峰以備SDS-PAGE檢測。10個(gè)柱體積的1×BindingBuffer(8MUrea);6個(gè)柱體積的WASHBuffer(分別是含有10mM咪唑,20mM咪唑的1×BindingBuffer(8MUrea));注:也可以根據(jù)定量工作液錯(cuò)落估計(jì)蛋白的濃度,以確定每步的淋洗是否完全。4.洗脫:6個(gè)柱體積的1×BindingBuffer(8MUrea,50mM咪唑);6個(gè)柱體積的

8、1×BindingBuffer(8MUrea,100mM咪唑);6個(gè)柱體積的1×BindingBuffer(8MUrea,300mM咪唑);留樣做SDS-PAGE;注:也可以不使用含100mM咪唑的洗脫液;至于每步用多少體積的洗脫液,可根據(jù)粗略定量

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁,下載文檔查看全文

此文檔下載收益歸作者所有

當(dāng)前文檔最多預(yù)覽五頁,下載文檔查看全文
溫馨提示:
1. 部分包含數(shù)學(xué)公式或PPT動(dòng)畫的文件,查看預(yù)覽時(shí)可能會(huì)顯示錯(cuò)亂或異常,文件下載后無此問題,請放心下載。
2. 本文檔由用戶上傳,版權(quán)歸屬用戶,天天文庫負(fù)責(zé)整理代發(fā)布。如果您對本文檔版權(quán)有爭議請及時(shí)聯(lián)系客服。
3. 下載前請仔細(xì)閱讀文檔內(nèi)容,確認(rèn)文檔內(nèi)容符合您的需求后進(jìn)行下載,若出現(xiàn)內(nèi)容與標(biāo)題不符可向本站投訴處理。
4. 下載文檔時(shí)可能由于網(wǎng)絡(luò)波動(dòng)等原因無法下載或下載錯(cuò)誤,付費(fèi)完成后未能成功下載的用戶請聯(lián)系客服處理。